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    FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統
    更新時間:2018-03-16
    訪問次數:4290
    FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統將GFP和葉綠素熒光動力學成像的全部功能擴展到了單細胞和亞細胞結構水平。所有傳統的熒光參數都可以以測微計的分辨率成像,因此對單個細胞、單個葉綠體甚至基粒-基質類囊體片段的研究都可以實現。

     

    FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統
    FC 2000顯微葉綠素熒光成像系統將GFP和葉綠素熒光動力學成像的全部功能擴展到了單細胞和亞細胞結構水平。所有傳統的熒光參數都可以以測微計的分辨率成像,因此對單個細胞、單個葉綠體甚至基粒-基質類囊體片段的研究都可以實現。
    應用領域
    ·         植物光合特性和代謝紊亂篩選
    ·         生物和非生物脅迫的檢測
    ·         植物抗脅迫能力或者易感性研究
    ·         代謝混亂研究
    ·         長勢與產量評估
    ·         植物——微生物交互作用研究
    ·         植物——原生動物交互作用研究
    ·         基因工程與分子生物學研究,GFP、BFP、YFP、CY3、CY5等示蹤成像
    典型樣品
    ·         葉片切片
    ·         綠藻
    ·         藻青菌
    ·         葉綠體
    ·         類囊體
    ·         其它
    工作原理
    植物熒光成像系統用于檢測植物發出熒光的動態變化和空間分布,Kautsky效應過程、熒光淬滅及其它瞬時熒光過程(瞬變)都可被攝取,從而提供2維熒光圖像。測量與計算參數多達50多個:F0, FM, FV, F0', FM', FV', QY(II),NPQ, ΦPSII, FV/FM, FV'/FM', RFd, qN, qP, PAR吸收率, 光合電子傳遞率ETR等。這些熒光參數圖像可用于研究植物的光合生理、優良品種篩選及果實的成熟過程等等,還可研究因病變、衰老、環境脅迫或基因突變造成的熒光變化。
    功能特點:實驗過程和測量參數
    ·         葉綠素熒光與GFP、BFP、YFP、CY3、CY5等熒光成像
    ·         Meter功能
    ·         熒光誘導過程(Kausky效應)分析
    ·         葉綠素熒光淬滅過程(NPQ過程)分析
    ·         PAR吸收系數測定
    ·         QA再氧化過程分析
    ·         可測量與計算多達50個參數: Fo, FM, Fs, Fo’, FM’, FV’, QY(II), NPQ, FV/FM, FV’/FM’, Rfd, qN, qP, PAR-吸光系數, 電子傳遞速率(ETR), 及其它。
    技術參數
    ·         F1/1.4目鏡,有不同放大倍數選擇(1.2x, 5x, 10x, 20x, 40x, 60x, 100x),測量區域zui大可達2x2cm(1.2倍),zui小達微米級
    ·         光源:藍色 LED (450nm),紅色 LED (630nm),UV LED (390nm) 及 IR 735nm (用于PAR、暗適應及 F0`)
    ·         測量光閃10µs - 100µs可調;光化學光可達3000µmol/m2.s;飽含光閃(脈沖)zui大可達8000µmol/m2.s,強度和持續時間(zui大達2s)可調
    ·         STF -單次翻轉飽和光閃,強度可達120,000 µmol(photons)/m².s ,100µs脈沖
    ·         顯微葉綠素熒光成像系統自帶濾光輪(濾波器輪)和紅外光源(IR 735nm)
    ·         可根據需要測量多種熒光參數達25個以上,用于Kautsky誘導效應、熒光淬滅、OJIP等測量分析研究
    ·         可根據客戶需求加接配置用于綠色熒光蛋白(GFP)成像。帶6位濾波輪的顯微葉綠素熒光成像系統可測量更復雜的參數,如GFP, BFP, YFP, CY3, CY5等
    ·         CCD檢測器帶寬:400 – 1000 nm
    ·         CCD 制式:512 x 512 像素; 可選 640 x 480 像素或 1392 x 1040 像素
    ·         像素尺寸:8.2 µm x 8.4 µm
    ·         A/D 轉換分辨率:12 位
    ·         光譜響應:540 nm處量子效率zui高(70 %),400 nm 和 650 nm 處轉降50 %
    ·         讀出噪音:低于12eRMS,典型10e
    ·         滿阱容量:大于 70,000 e (unbinned)
    ·         成像頻率:50 張圖片每秒
    ·         Bios:固件可升級
    ·         通訊方式:USB 2.0
    ·         電源輸入:Appr. 1100 W
    ·         供電電壓:90 – 240 V
       
     
    操作軟件與實驗結果
    ·         內置常用測量程序
    • 用戶可自定義實驗程序,界面友好
    ·         可自動重復測量
    ·         視野內單個植物或樣品的自動識別與標記
    ·         視野內所有樣品數據的動力學分析
    ·         多圖像處理工具
    ·         條形碼讀卡器支持,便于批量處理樣品
    ·         數據可導出為excel
    ·         Windows 2000, XP, Vista兼容
     
    配置型號指南:
    • 1. Micro-FluorCam FC 2000-ST
      內含: CCD 相機; 簡單顯微鏡架;光學組件;控制單元;高性能PC;激發光源;軟件包;使用手冊.
    • 2. Micro-FluorCam FC 2000-EN
      內含: CCD 相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學組件;控制單元;高性能PC;激發光源;軟件包;使用手冊.
    • 3. Micro-FluorCam FC 2000-MFW
      內含: 6位濾波輪; CCD相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學組件;控制單元;PC高性能PC;激發光源;軟件包;使用手冊.
    • 4. Micro-FluorCam FC 2000-EFW
      內含:6位*軟件控制的濾波輪; CCD相機;帶可更換可擴展組件的機械強化顯微鏡架(Olympus BX40);機械強化光學組件;控制單元;高性能PC;激發光源;軟件包;使用手冊.
    • 5. Kinetic Fluorescence Microscope FC 2000-Z 詳見FKM多功能熒光動態顯微監測系統
    典型應用:

    Scheme of the Micro-FluorCam
     
     
    產地:歐洲
    參考文獻:
    l           A microscope for two-dimensional measurements of in vivo chlorophyll fluorescence kinetics using pulsed measuring radiation, continuous actinic radiation, and saturating flashes . Kuepper H. et al, 2000. Photosynthetica
    l           New insights into photosynthetic oscillations revealed by two-dimensional microscopic measurements of chlorophyll fluorescence kinetics in intact leaves and isolated protoplasts. Ferimazova N. et al. (2002): Photochemistry and Photobiology
    l           Microscopy and single molecule detection in photosynthesis. Vacha F. et al, 2005. Micron
    l           Stress-induced filament fragmentation of calothrix elenkinii (cyanobacteria) is facilitated by death of high-fluorescence cells. Adamec F, et al. (2005): Journal of Phycology
    l           Identification of Photosystem I and Photosystem II enriched regions of thylakoid membrane by optical microimaging of cryo-fluorescence emission spectra and of variable fluorescence. Vacha F. et al, 2007. Micron

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